云霞资讯网

5mC RIP-报告(RNA甲基化m5C)

一、实验目的:利用5mC抗体结合并沉淀具有5mC修饰的RNA片段;qPCR检测验证目标基因5mC修饰情况及具体位点。二、

一、实验目的:

利用5mC抗体结合并沉淀具有5mC修饰的RNA片段;qPCR检测验证目标基因5mC修饰情况及具体位点。

二、实验材料

主要试剂

试剂名称

厂家

货号

PMSF

Genstar

B111-01

磷酸酶抑制剂

Selleck

B15001

蛋白酶抑制剂

Selleck

B14001

反转录试剂盒

TAKARA

RR037A

Anti-5-methylcytosine (5-mC) 抗体

ABCAM

ab10805

Murine RNase Inhibitor(40 U/µL) 鼠源RNase抑制剂

Yeasen

10603ES05

RNA甲基化免疫共沉淀试剂盒(Merip KIT)

Bio.ruqi

RQM008

qPCRmix

Yeasen

11202ES03

主要仪器及器材

仪器名称

厂家

货号

高速冷冻离心机

湘仪

TGL-16

PCR仪

BIO-RAD

PTC-100

DynaMag™-2磁力架

Thermo

12321D

荧光定量qpcr仪

Thermo Fisher Scientific

ViiA7

垂直混匀器

Kylin-Bell

BE-1100

三、蛋白与RNA信息

抗体信息:

Anti-5-methylcytosine (5-mC) 抗体

四、实验步骤

(一)RNA提取

1.样本前处理:收集1×10^7细胞后,用预冷的 1×PBS漂洗两次,1000 rpm 室温离心5 min,去上清;

2.向细胞中加入1 mL Trizol 裂解,吹打至完全看不到细胞团块,室温放置 5 min;

3.按1 mL Trizol 加入200 μL氯仿,盖好管盖(注意:此次一定要盖好盖子,避免震荡过程中液体渗出)。用手剧烈震荡15 s,室温放置3 min;

4.12000 g、4℃离心 15 min;

5.小心转移上清液(约500 μL)至新的1.5 mL无酶离心管中;

6.加入等体积异丙醇,室温静置10min;(若预期RNA量比较少,可加入适量糖原,并于-20℃或-80℃沉淀过夜;)

7.12000 g、4℃离心 10 min;弃掉上清,保留沉淀;

8.加入1 mL 75%乙醇,颠倒混匀;

9.7500 g、4℃离心 5 min;弃掉上清;

10.7500 g、4℃离心 30s,用10ul小枪头尽量吸掉残留的液体;

11.室温静置5~10min,晾干乙醇;(看到RNA变半透明即可)

12.加入适量RNase-free水溶解RNA,室温静置10min,令RNA可以充分溶解;

13.RNA冻存到-80℃冰箱备用。

(二)RNA片段化

1.  RNA 样品中加入等体积的frag buffer,吹打混匀;

2.  94℃孵育6min;

3.用酚氯仿回收RNA;

4.配制1%琼脂糖凝胶检测RNA片段大小;

5.取2μL RNA样品作为Input样品-80℃保存备用;

6.取分别取20 μL RNA 样品作为m6A组及IGG组。

(三)免疫沉淀

1.5mC组及IgG组分别中加入4μg5mC抗体及IgG抗体,置于垂直混匀器 4℃孵育过夜(16h)。

(五)protein A/G 与抗体结合

1.取出protein A/G磁珠,并充分震荡混匀;m6A组及IgG组中分别加入20ul磁珠,垂直混匀器 4℃孵育2h;

2.把样本置于磁力架上,静置1min,吸除上清;

3.向EP管中加入200ul洗涤缓冲液,轻轻吹打混匀;并于垂直混匀器4℃洗涤 5 min;

4.把样本置于磁力架上,静置1min,吸除上清;

5.重复3与4步骤3次。

(六)RNA纯化回收

1.input、m6A、IgG样本分别1 mL Trizol裂解液;

2.吹打混匀并置于垂直混匀器4℃裂解15min;

3.按照(一)步骤,纯化回收RNA;

(六)RNA反转录

1.  按照下列组分配制RT反应液(反应液制备请在冰上进行)。为了保证反应液配制的准确性,减少分装造成的误差,应按照比实际用量稍大的体积配制反应液,最后加入RNA样品。

试剂组分

使用量

终浓度

5×PrimeScript Buffer(for Real Time)

2uL

PrimeScript RT Enzyme Mix I

0.5uL

Random 6 mers(100μM)*1

0.5uL

50pmol

RNA

7uL

注意:注意反转录步骤RNA投入量按等体积进行,后续实验稀释及上机检测皆按比例进行。

2.按如下程序进行反转录:

37℃,15min;85℃,5sec;-20℃保存备用!

3.定量PCR检测

1)将Mix在4℃下融解,轻柔地上下颠倒混匀并进行短暂离心。

2) 冰上配制下表中的反应液

成分

加入量

终浓度

Hieff qPCR SYBR® Green Master Mix (lowRox)

5μL

ForwardPrimer (10μM)

0.2μL

0.2μM

ReversePrimer (10μM)

0.2μL

0.2μM

cDNA

2μL

RNase-free Water

to10μL

3)将反应管进行短暂离心,确保所有反应液在反应孔底部。

4)采用三步法程序进行反应:

循环数

步骤

温度

时间

荧光采集

1

预变性

95℃

5min

No

40

变性

95℃

10s

No

退火

60℃

30s

Yes

上述反应结束后,从60℃~95℃过程中进行熔解曲线分析

5.实验结果

qPCR检测结果(详细数据见附件excel”5mC RIP分析结果”)

5mC RIP-qPCR柱状图:

RNA片段化图: